发布时间: 2025-12-10 · 新闻信息
二氧化碳培养箱(CO₂ Incubator)是现代细胞生物学实验室中最核心的基础设备之一,其主要用于 哺乳动物细胞、干细胞、原代细胞、组织块、胚胎等 的体外培养。由于细胞对温度、湿度、CO₂ 浓度及无菌环境极为敏感,二氧化碳培养箱通过精准控制这些条件,为细胞提供接近体内的生长环境。
为了帮助科研与生产实验室正确使用 CO₂ 培养箱,确保细胞健康、保持实验可重复性,以下从 设备原理、细胞培养流程、关键技术要点及维护方法 进行系统介绍。
CO₂ 培养箱通过对四个关键参数的精准控制来模拟细胞体内生长环境:
一般设定在 37°C,依靠加热模块、热风循环或直热系统维持均一温度。
稳定在 5% 左右,通过 CO₂ 气瓶与传感器自动调节,用于维持培养基的 pH 稳定性(HCO₃⁻-CO₂ 缓冲体系)。
通常保持在 95%,由培养箱底部或外置水盘蒸发提供,避免培养基蒸发浓缩。
依靠:
HEPA 高效过滤
UV 杀菌灯(部分型号)
抗污染腔体材料(如铜合金或抗菌涂层)
高温灭菌功能(180°C/90°C 高温灭菌)
以上系统共同为细胞提供安全稳定的生长环境。
以下为标准细胞培养流程,适用于多数细胞系(如 HeLa、293T、CHO、HepG2、干细胞等)。
进入细胞房之前需准备好:
无菌培养瓶/培养皿/六孔板
完全培养基(含血清)
PBS 缓冲液
胰酶 / 细胞消化液
血球计数板或自动计数仪
无菌移液枪与吸头
操作必须在 生物安全柜(BSC)内进行,确保无菌环境。
将冻存细胞从液氮罐迅速取出
置于 37°C 水浴中快速摇匀复苏
在 BSC 内倒入含完全培养基的离心管
1200 rpm 离心 3–5 分钟
弃上清,补加新鲜培养基重 suspend
转移至培养瓶并放入 CO₂ 培养箱
此时需观察细胞是否贴壁、状态是否良好。
不同细胞系有不同特性:
24 小时内逐渐贴壁
培养基变黄说明代谢旺盛,需要及时更换
不贴壁,但需要适当密度才可持续生长
需定期评估密度并补充营养
当细胞达到 70–90% 融合度时,应及时传代:
吸除培养基
PBS 清洗去除血清残留
加入胰酶消化(37°C 1–3 分钟)
观察细胞圆缩、脱落
加入新鲜培养基终止消化
轻轻吹匀,进行分装
按 1:2、1:3 或其他比例传代
放回 CO₂ 箱继续培养
关键点:避免过度消化与剧烈吹打。
通过倒置显微镜观察:
细胞形态是否规则
是否有漂浮碎片
是否出现颗粒化、空泡化(可能污染)
细胞长势是否均匀
良好状态的细胞应:
✔ 形态饱满
✔ 间隙清晰
✔ 附着良好
✔ 无明显杂质漂浮
外壁酒精擦拭
培养皿底部无水滴
不能携带污染物进入培养箱
每次开门会导致 CO₂ 与温度急剧下降,影响细胞稳定性。
建议:单次连续操作 ≤ 1 分钟。
避免以下问题:
水垢沉积
细菌滋生
培养基蒸发加速
部分型号建议加入防污染剂。
CO₂ 与温度偏差将直接影响培养基 pH 和细胞状态。
以免阻挡空气循环、产生局部污染源。
常规维护周期:
每周:擦拭内壁、检查水盘
每月:更换水、消毒内壁
每季度:CO₂ 传感器校准
每半年:高温杀菌一次
每年:更换 HEPA 过滤器(视品牌)
可能原因:
细胞过度融合
CO₂ 浓度偏高
培养基污染
温度设定偏差
可能原因:
胶原蛋白不足(对于某些细胞系)
胎牛血清浓度不足
消化过度
培养瓶材质不适配
多为细菌或霉菌在水盘或箱壁滋生,需要立即进行:
✔ 高温灭菌
✔ 更换水
✔ 检查是否有污染物进入箱内
检查:
CO₂ 气瓶压力是否足够
传感器是否需要校准
门封条是否漏气
根据品牌不同,主流 CO₂ 培养箱具备以下技术:
不受湿度影响,检测灵敏、稳定。
彻底杀灭细菌、霉菌与支原体。
提供 Class 100 等级洁净空气。
减少污染附着点,提高洁净性。
确保温度与 CO₂ 均匀性,消除冷热区。
防止玻璃门结露,保持视野清晰。
二氧化碳培养箱不仅是细胞的生长空间,更是影响细胞状态、实验重复性和结果可信度的关键工具。
正确的设备使用、高标准的无菌操作、精准的 CO₂ 与温控系统,加上合理的维护保养,是保障细胞健康、提高实验质量的基础。
通过科学规范的细胞培养流程,结合良好的实验习惯和高性能 CO₂ 培养箱,科研工作者才能在细胞增殖、转染实验、药物筛选、基因编辑、干细胞培养等领域获得稳定、可靠的数据结果。

微信
长沙实了个验仪器制造有限公司 湘ICP备2025132512号